El laboratorio de Fotofísica y Espectroscopia Molecular nació a principio de los años 80, como una manera de impulsar la investigación en fotofísica y fotoquímica en la Pontificia Universidad Católica de Valparaíso y en Chile. En ese momento se adjudicaron dos proyectos financiados por Fundación Andes  y CONICYT (FONDECYT), con el fin de equipar el laboratorio y promover la investigación en el área.  Estos proyectos contaron la colaboración de las Universidades, de Santiago, de Chile y Pontificia Universidad Católica de Chile. A través de estos proyectos y la participación activa de los profesores fundadores del laboratorio, Carlos Patricio Sotomayor y Juan Eduardo Brunet, se desarrollo la línea de investigación principal del laboratorio, espectroscopía de fluorescencia. Inicialmente el laboratorio contaba con dos fluorímetros, uno para realizar medidas en estado estacionario y el otro para realizar mediciones resueltas en el tiempo en el dominio de la frecuencia. En el año 2005, se adquirió un espectrofluorimetro de fase y modulación K2 (ISS Inc., USA) gracias al financiamiento del proyecto MECESUP UCH0408. Actualmente el laboratorio tiene por objetivo el desarrollar investigación en el estudio de sistemas biológicos utilizando espectroscopía y microscopía cuantitativa de fluorescencia. Recientemente se ha incorporado como línea de investigación la aplicación de la tecnología ultravioleta pulsada (láser excímero) en la industria de alimentos y en la industria farmacéutica.

• Biofísica de sistemas micro-heterogéneos lípidos y el estudio de la interacción lípido-lípido, lípido-proteína, proteína-proteína, utilizando espectroscopía y microscopía de fluorescencia.
• Cinética enzimática y aplicaciones biotecnológicas de proteínas. Capacidad antioxidante de compuestos naturales y alimentos funcionales.
• Aplicaciones industriales de la tecnología ultravioleta pulsada

• Dr. Luis Felipe Aguilar Cavallo
• Dr. Patricio Alejandro Leyton Bongiorno

Carlos Sotomayor, Francisco Cuevas, Luis Aguilar, Marco Soto, and Susana Sánchez. 2008. “Influence of cholesterol on the lateral mobility of Na+/K-ATPase reconstituted on giant unilamelar vesicles”. Biophys J. 94(2), 1925.

Mario Suwalsky, Raquel González, Fernando Villena, Luis F. Aguilar, Carlos P. Sotomayor, Silvia Bolognin and Paolo Zatta. 2009. “Structural effects of tetrachloroauric acid on cell membranes and molecular models”. Coordination Chemistry Reviews. 253, 11-12, 1599-1606.

M. Suwalsky, V. Novoa, F. Villena, C.P. Sotomayor, L.F. Aguilar, A. Ronowska and A. Szutowicz. 2009. “Structural effects of Zn2+ on cell membranes and molecular models”. Journal of Inorganic Biochemistry. 103, 5, 797-804.

Mario Suwalsky, Raquel González, Fernando Villena, Luis F. Aguilar, Carlos P. Sotomayor, Silvia Bolognin, Paolo Zatta. 2010. “Human erythrocytes and neuroblastoma cells are affected in vitro by Au(III) ions”. Biochemical and Biophysical Research Communications 397, 226–231.

Mario Suwalsky, Pablo Zambrano, Sigrid Mennickent, Fernando Villena, Carlos P. Sotomayor, Luis F. Aguilar and Silvia Bolognin. 2011.”Effects of phenylpropanolamine (PPA) on in vitro human erythrocyte membranes and molecular models”. Biochemical and Biophysical Research Communications. 406, 320–325.

Luis F. Aguilar and Carlos P. Sotomayor. 2011. “Application Notes: Time Resolved Fluorescence in Unilamellar Vesicles”.

http://www.iss.com/resources/research/application_notes/K2CH_UnilamellarVesicles.html

Yareli Rojas-Aguirre, Carlos Patricio Sotomayor, Luis Felipe Aguilar, Fernando Villena, Ivan Castillo, David J. Hernández, César Mendoza-Martínez, Francisco Hernández-Luis, Mario Suwalsky. 2012.  “Effects of an antimalarial quinazoline derivative on cell membrane molecular model and human erythrocytes”. Biochimica et Biophysica Acta 1818, 738–746.

M. Suwalsky,    P. Fierro,    F. Villena,    L.F. Aguilar,    C.P. Sotomayor,    M. Jemiola-Rzeminska,    K. Strzalka,    S. Gul-Hinc,   A. Ronowska,    A. Szutowicz. 2012. “Human erythrocytes and neuroblastoma cells are in vitro affected by sodium orthovanadate”. Biochimica et Biophysica Acta 1818, 2260-2270.

Luis F. Aguilar, José A. Pino, Marco A. Soto-Arriaza, Francisco J. Cuevas, Susana Sánchez, Carlos P. Sotomayor. 2012. “Dynamic and Structural Differential Behavior of Lipid-Cholesterol Domains in Model Membranes”. PLoS ONE 7(6): e40254. doi:10.1371/journal.pone.0040254

Manuel Bravo M., Alejandro C. Olivieri, Francisca Vera C., Felipe Aguilar, Waldo Quiroz V. 2013. “Determination of tributyltin at parts-per-trillion levels in natural waters by second-order multivariate calibration and fluorescence spectroscopy”. Microchemical Journal 106, 95–101.

• Espectrofluorímetro multifrecuencial de fase y modulación ISS modelo K2.
• Espectrofluorímetro para fluorescencia en estado estacionario ISS modelo GREG200.
• Espectrofotómetro Perkin Elmer FTIR serie 1600 que incluye la técnica de reflectancia total atenuada (ATR).
• Espectrofotómetro UV-Vis Shimadzu UVmini-1240.
• Micro Ultracentrífuga preparativa Hitachi modelo CS120GXL.
• Láser pulsado excímero Lambda Physik modelo COMPex 110.
• 2 PC estaciones de trabajo con procesador i7 y 8GB en RAM para Simulación Molecular.
• Oxímetro YSI modelo 5300A-2. Medidor de oxígeno disuelto Delta OHM D09709.
• Turbidímetro Merck modelo Turbiquant 1000IR. Refractómetro MEIJI Techno.
• Lámpara UV Cole-Palmer modelo 9815. Homogenizador de tejidos PRO pro250.
• Sonicador de punta modelo Labsonic 1510.
• Sistema de cromatografía de proteínas FLP con colector de fracciones y detector UV/Vis ISCO.
• Estufa SHEL-LAB modelo 13330GX.
• 2 balanzas analíticas. Balanza semi-analítica.
• 2 bombas de vacío Welch.
• Bomba peristáltica Cole-Palmer modelo Masterflex L/S. Purificador de agua Millipore modelo Simplicity.
• Estufa de cultivo microbiológica JOUAN modelo PRECISION.
• 5 baños termostatizados. Centrifuga clínica de sobremesa.
• 3 Vortex.
• 3 pHmetros.
• 2 Cámaras de electroforesis.